MS-300半自动根系观测系统- 北京力科惠泽科技有限公司

MS-300半自动根系观测系统

上一个：

下一个：

MS-300半自动根系观测系统是为水平或小角度安装的微根管观测而设计的，常用于根窖或配备有大量微根管的根系实验室。该系统由控制单元、双视角成像模块和带定位齿条的微根管组成。双视角成像模块固定在微根管内的定位齿条上，控制单元根据ICAP命名规则对微根管进行编号，并控制双视角成像模块在微根管内独立移动及定位拍摄，最后自动返回初始位置。这种智能化设计能够让操作者只需在不同微根管之间移动双视角成像模块即可；此外，控制单元通过RFID（射频识别标签）标记微根管编号，即可同时控制多个双视角成像模块，以便快速完成大批量根系观测实验。MS-300半自动根系观测系统成像分辨率高达2500dpi，拍摄图像存储于可移动U盘中，控制单元能够根据不同类型的微根管，单独或批量的预先设定拍摄位置。微根管两端采用磁性密封盖设计，可手动变换位置，便于拍摄到微根管内根系图像。定位齿条既可留在微根管内，也可以在各个微根管之间轮换使用。

主要特点

双摄像头，分辨率可达2500dpi；

具备非线性校准功能，可消除微根管的曲面效应；

成像速度快，小于1秒，无需白平衡，可高效获取图像；

双视角成像模块借助定位齿条实现精确定位，通过磁性密封盖可转动定位齿条；

操作者可同时操作多个双视角成像模块，特别适用于根窖或配备有大量微根管的根系实验室；
锂电池供电，用户可自行更换电池；
专为水平或者小角度安装的微根管设计，微根管及定位齿条长度最大可延长至2米；
控制单元采用RFID技术自动识别各个微根管编号；

技术参数

1.成像方向：双视角成像模块

2. 成像面积：
31mmx24mm（外径7cm微根管）
20mm×20mm（软件可自动裁剪成标准面积，同时可消除微根管曲面效应）

3. 图像分辨率及格式：800万像素（3280×2464像素；2500dpi）；jpg格式；

4. 成像速度：＜1秒/张图像；

5. 图像命名：遵循ICAP命名规则；

6. 照明光源：环形LED照明，强度可达160-230流明，强度软件可调；

7.操作系统：带LCD触摸屏的控制单元；

8.操作软件：VSI软件（触摸感应），实验和图像获取程序化（包括日期和位置）；

9.图像存储：2个可插拔16GB移动盘；

10.供电模块：可充电锂电池，含充电器，用户可自行更换电池；

11.双视角成像模块：铝质外壳，阳极电镀，长300mm，直径62mm，重720g；

12.定位齿条：淬火钢材质，8mm x 7mm x 700-2000mm，重670-2000g(宽 x 高 x 长)；

基本配置

控制单元，高清双视角成像模块，2个可插拔16GB移动盘，RFID标签，出厂定焦（外径7cm微根管），2根1.0米的定位齿条，2个磁性密封盖，便携箱，锂电池及充电器，VSI软件包；

选配：可增加双视角成像模块，特别适合根窖或配备有大量微根管的根系实验中。

MS-300应用案例

案例1. 德国塞尔豪森根窖实验，样地略微倾斜，坡度大约为4°，样地土壤主要为由粉沙壤土层发育而来的淋溶土。在斜坡的底部厚度最大为3 m，而在顶部则不存在；一个根窖建在斜坡的顶部，另一个根窖建在斜坡的底部。在根窖建成之前，冬大麦-冬小麦在此区域轮作。

图1. 地表施工图2. 地下微根管设置

图3.不同时期根系图片对比

案例2. 德国哥廷根大学根系实验室是位于大学实验植物园的野外研究机构，该实验室于2005年成立，旨在对木本植物的根系进行监测和实验操作。实验室由八个排尽水的植物容器（180 cm长 × 180 cm宽 × 220 cm深）组成，两行放置，可以从两侧进入容器的地下部分。该根系实验室有一个大型可移动屋顶，在下雨时会自动覆盖植物容器，从而可以控制实验的土壤水分。它可以进行诸如基于地上植物器官以至根系水平，幼树对土壤养分和/或水分状况差异的响应等相关实验研究。

案例3. 英国EMR根系实验室是一个可以对地上以及地下的多年生作物进行现场观察和采样的独特设施。为英国国家级实验室，支持国家战略需求，鼓励科学界内多学科合作，以提供世界领先的研究。该地下实验室最初建于1960年代，在2013年由生物技术和生物科学研究委员会（BBSRC）进行了翻新。目前实验室已经重新装备，可研究苹果树以及多年生草本的根系生长，从而了解碳从植物到土壤的流动。多年生草本和高密度苹果园的种植已于2014年进行。

案例4. 荷兰奈梅根人工气候室——玉米根系生长试验。2017年5月至7月，科学家Nyncke Hoekstra和Eric Visser在奈梅根人工气候室中进行了一个玉米生长实验，以研究根系对不同营养处理的生长反应。这种野外人工气候室可使作物处于近田间条件下生长，并能重点关注其根系生长。

产地与厂家：奥地利VSI

参考文献

Britschgi, D., P. Stamp, and J. M. Herrera. 2013. Root Growth of Neighboring Maize and Weeds Studied with Minirhizotrons.
Weed Science 61:319-327.
Iversen, C. M., M. T. Murphy, M. F. Allen, J. Childs, D. M. Eissenstat, E. a. Lilleskov, T. M.Sarjala, V. L. Sloan, and P. F. Sullivan.
2011. Advancing the use of minirhizotrons in wetlands. Plant and Soil 352:23-39.
McCormack, L. M., D.M. Eissenstat, A. M. Prasad, and E. A. Smithwick. 2013. Regional scale patterns of fine root lifespan
and turnover under current and future climate. Global Change Biology 19:1697-1708.
Milchunas, D. G. 2012.Biases and Errors Associated with Different Root Production Methods and Their Effects on Field
Estimates of Belowground Net Primary Production Measuring Roots. Pages 303-339 in S. Mancuso, editor. Measuring
roots - An updated approach. Springer Berlin Heidelberg.
Pinno, B. D., S. D. Wilson, D. F. Steinaker, K. C. J. Van Rees, and S. A. McDonald. 2010. Fine root dynamics of trembling
aspen in boreal forest and aspen parkland in central Canada. Annals of Forest Science 67.
Rewald, B., and J. E. Ephrath. 2013. Minirhizotron techniques. Pages 1-15 in A. Eshel and T. Beeckman, editors. Plant roots:
The hidden half. CRC Press, New York, USA.
Zeng, G., S. T.Birchfield, and C. E. Wells. 2010. Rapid automated detection of roots in minirhizotron images. Machine Vision
and Applications 21:309-317.
Dannoura, M., Y.Kominami, N. Makita, and H. Oguma. 2012. Flat Optical Scanner Method and Root Dynamics Measuring
Roots. Pages 127-133 in S. Mancuso, editor. Measuring roots - An updated approach. Springer Berlin Heidelberg.
Nakahata, R., and A.Osawa. 2017. Fine root dynamics after soil disturbance evaluated with a root scanner method. Plant and
Soil 419:467-487.